As Bases da Biologia Celular, Molecular e Tecidual

RELATÓRIO DE PRÁTICA 01

Nome e matrícula

RELATÓRIO DE AULAS PRÁTICAS: Bases da biologia celular, molecular e tecidual

DADOS DO(A) ALUNO(A):

NOME: Flávio Raydel Fernandes de Paula MATRÍCULA: 04182572

CURSO: Fisioterapia POLO: Universidade da Amazônia

PROFESSOR(A) ORIENTADOR(A): Waldemir Rego

ORIENTAÇÕES GERAIS:

• O relatório deve ser elaborado individualmente e deve ser escrito de forma clara e

• concisa;

• O relatório deve conter apenas 01 (uma) lauda por tema;

• Fonte: Arial ou Times New Roman (Normal e Justificado);

• Tamanho: 12;

Margens: Superior 3 cm; Inferior: 2 cm; Esquerda: 3 cm; Direita: 2 cm;

• Espaçamento entre linhas: simples;

• Título: Arial ou Times New Roman (Negrito e Centralizado).

TEMA DE AULA: MICROSCOPIA ÓPTICA

RELATÓRIO:

• PERGUNTAS:

• Descreva as partes do microscópio óptico e como eles se classificam.

O microscópio óptico é composto por partes mecânicas (estrutura de sustentação e ajuste) e partes ópticas (responsáveis pela formação da imagem).

• Partes mecânicas: base, braço, tubo, platina (onde se coloca a lâmina), parafuso macrométrico e micrométrico (ajuste de foco), revólver porta-objetivas.

• Partes ópticas: sistema de iluminação (espelho ou lâmpada), condensador, diafragma, lentes objetivas (geralmente de 4x, 10x, 40x e 100x) e ocular (normalmente de 10x ou 15x).

A classificação do microscópio se dá pelo tipo de fonte de luz e sistema de observação. O microscópio utilizado em aula foi do tipo óptico composto, pois possui mais de uma lente no sistema de ampliação.

• Comente quais são os cuidados que devem ser tomados com a utilização desse equipamento.

• • Transportar sempre com uma das mãos no braço e outra na base.

• • Evitar tocar nas lentes com os dedos, usando papel específico para limpeza.

• • Iniciar sempre a observação com a menor objetiva (4x) e ajustar progressivamente.

• • Nunca usar o parafuso macrométrico com objetiva de 40x ou 100x para não danificar a lâmina.

• • Manter o microscópio limpo, coberto após o uso e guardado em local adequado.

•

• Represente o poder de ampliação de cada lente objetiva através de fotos da aula prática.

•

• Objetiva de 4x :Objetiva de 10x : Objetiva de40x

TEMA DE AULA: MÉTODOS EMPREGADOS NO ESTUDO DAS ´CELULAS E TECIDOS

RELATÓRIO:

• PERGUNTAS:

• Comente quais são as principais etapas realizadas na confecção de preparações histológicas e suas respectivas funções.

A preparação histológica segue etapas fundamentais:

1. Fixação – preserva a estrutura e impede a autólise e putrefação.

2. Desidratação – retira a água do tecido por banhos em álcool crescente.

3. Clareamento ou diafanização – substitui o álcool por solventes como xilol, tornando o tecido translúcido.

4. Inclusão – infiltração em parafina ou resina para dar rigidez ao corte.

5. Microtomia – cortes ultrafinos realizados em micrótomo.

6. Montagem em lâmina – fixação do corte em lâminas de vidro.

7. Coloração – uso de corantes (ex.: hematoxilina-eosina) para contraste e diferenciação estrutural.

8. Montagem final – lamínula com resina sintética para preservação.

Cada etapa tem função específica: a fixação mantém a integridade, a inclusão dá suporte, a microtomia permite cortes delgados, e a coloração destaca componentes celulares

• Acrescente fotos da aula prática que identifiquem as etapas descritas anteriormente.

•

TEMA DE AULA: CITOQUÍMICA

RELATÓRIO:

• PERGUNTAS:

• Descreva as técnicas citoquímicas utilizadas para estudos e diagnósticos em laudos histopatológicos.

As técnicas citoquímicas permitem identificar constituintes químicos específicos dentro das células e tecidos, auxiliando na pesquisa e no diagnóstico de doenças. Algumas das principais técnicas são:

• Hematoxilina-eosina (H&E): corantes básicos da histologia. Hematoxilina evidencia ácidos nucleicos (DNA e RNA) em azul-arroxeado, enquanto a eosina cora proteínas do citoplasma em rosa.

• PAS (Ácido Periódico de Schiff): detecta polissacarídeos, glicogênio, mucinas e glicoproteínas. Produz coloração vermelho-arroxeada.

• Tricrômico de Masson: diferencia fibras colágenas (azul/esverdeado) de fibras musculares (vermelho).

• Sudan III/IV e Oil Red O: identificam lipídios em cortes congelados, corando-os em tons de