A Cinética Bioquímica
Por: Flavia Teixeira • 30/6/2025 • Relatório de pesquisa • 1.964 Palavras (8 Páginas) • 15 Visualizações
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LICENCIATURA EM QUÍMICA
Cinética Enzimática
Disciplina: Bioquímica
Professor: Ivanilton Nery
Alunos:
Flavia Tavares Teixeira
Lidiane Nascimento
Luiz Paiva
1º semestre/2015
OBJETIVO:
Estudar a velocidade da reação da enzima invertase em meios com diferentes concentrações de substratos, pH e temperatura.
Estudar a aplicação tecnológica do ácido ascórbico.
INTRODUÇÃO:
O estudo da velocidade de reações que utilizam enzimas se chama Cinética Enzimática. De acordo com a literatura basicamente três fatores influenciam a velocidade de uma reação, a concentração do substrato, o pH do meio e a temperatura do meio.
A enzima escolhida para estudo é a invertase, obtida a partir de células do microrganismo Saccharomycescerevisae levedura importante principalmente no processo de fabricação do pão e de cervejas.
O açúcar; substrato; utilizado para o estudo é a sacarose, entretanto, esse açúcar não é redutor. Sendo assim, a velocidade a velocidade da reação da hidrólise catalisada pela enzima será determinada pela formação de açúcares redutores.
Após cada etapa da prática; estudo da concentração, pH e temperatura; será realizada a análise dos dados experimentais. A quantificação dos açúcares redutores será realizada por meio da técnica de espectrofotometria de UV-visível, utilizando como reagente colorimétrico o DNS (ácido ,5-dinitrosalicílico) quanto mais forte a cor do meio maior a concentração de açúcares redutores no meio. A resposta do espectrofotômetro é um determinado valor de absorvância para cada amostra. Sabendo-se a concentração de sacarose inicial em cada amostra, será possível elaborar um gráfico da absorvância como função da concentração de glicose do meio.
Com a elaboração do gráfico será possível relacionar os aspectos da curva encontrada com os conceitos teóricos estudados, como pro exemplo a velocidade enzimática máxima.
A prática ainda teve por objetivo estudar a aplicação tecnológica do ácido ascórbico. Sabe-se que o ácido ascórbico é amplamente utilizado em sucos de maçã industrializados. O ácido ascórbico, também chamado de vitamina C é um poderoso antioxidante encontrado principalmente em frutas cítricas como acerola, limão, laranja, kiwi e outras.
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MATERIAIS:
- Tubos de ensaio 10 X 150 mm;
- Banho de água à 37ºC;
- Banho de água fervente;
- Banho de gelo;
- Pipetas de 2, 5 e 10 ml;
- Becheres de 400 e 600 ml;
- Estante para tubos de ensaio.
- 7 tubos de ensaio com tampa;
- 1 tubo de ensaio 10 X 150 mm contendo 15 ml de DNS;
- 1 tubo de ensaio 10 X 150 mm contendo 7 ml de invertase;
- 1 tubo de ensaio 10 X 150 mm contendo 7 ml de solução de sacarose a 25 mmol/l em tampão acetato pH 5,0;
- 1 tubo de ensaio 10 X 150 mm contendo 7,5 ml de tampão acetato pH 5,0;
- 1 tubo de ensaio com tampa contendo 1,5 ml de solução de sacarose a 0,2 mol/l em tampão acetato pH 3,6;
- 4 tubos de ensaio com tampa contendo 1,5 ml de solução de sacarose a 0,2 mol/l em tampão acetato pH 5,0;
- 1 tubo de ensaio com tampa contendo 1,5 ml de solução de sacarose a 0,2 mol/l em tampão fosfato pH 8,0;
- 1 estante para tubos de ensaio;
- 4 pipetas de 2 ml;
- 2 pipetas de 5 ml;
- 1 pipeta de 10 ml;
- 2becheres de 600 ml;
REAGENTES:
- Enzima invertase;
- Tampão acetato pH 5,0;
- Solução de sacarose a 25 mmol/l (9,5 g/l) em tampão acetato pH 5,0;
- Solução de ácido 3,5-di-nitro-salicílico (DNS);
- Água destilada.
- Solução de sacarose a 0,2 mol/l (6,8 g/100 ml) em diferentes tampões (acetato pH 3,6; acetato pH 5,0 e fosfato pH 8,0).
PROCEDIMENTO EXPERIMENTAL:
Influência da Concentração de Substrato:
Em 7 tubos de ensaio com tampa, enumerados de 1 a 7, adicionou-se tampão acetato pH 5,0 e solução de sacarose 25 mmol/l conforme indicado pela tabela abaixo:
REAGENTES | TUBO 1 | TUBO 2 | TUBO 3 | TUBO 4 | TUBO 5 | TUBO 6 | TUBO 7 |
Tampão acetato pH 5,0 (ml) | 2,0 | 1,8 | 1,6 | 1,0 | 0,5 | 0,2 | 0,0 |
Solução de Sacarose 25 mmol/l (ml) | 0,0 | 0,2 | 0,4 | 1,0 | 1,5 | 1,8 | 2,0 |
Tabela 1: Descrição dos volumes de substratos.
Colocou-se os 7 tubos e o tubo contendo a enzima em banho de água à 37ºC por 5 minutos (aclimatação); Retirou-se os tubos do banho e adicionou-se em cada tubo, 0,5 ml de enzima. Incubou-se os tubos a 37ºC por 15 minutos para que a hidrólise acontecesse. Adicionou-se 1 ml de DNS, em cada tubo, para paralisar a reação, retirou-se imediatamente do banho e levou-se ao banho de água fervente por 5 minutos; Em seguida, retirou-se os tubos do banho fervente e os resfriou em água corrente, adicionou-se, em cada tubo, 6,5 ml de água destilada e homogeneizou-se.
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