Relatório de carboidratos em bioquímico

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FACULDADES INTEGRADAS APARÍCIO DE CARVALHO – FIMCA

CURSO DE MEDICINA

BRUNA ELER DE ALMEIDA

CAMILA FLÁVIA MATUDA CABRAL

GUILHERME CERQUEIRA COLOMBO

HENRIQUE SILVA MOREIRA

MAYRON GONÇALVES REIS BRUM

RELATÓRIO DA AULA PRÁTICA DE AMIDO-CARBOIDRATO

PORTO VELHO/RO

2017

BRUNA ELER DE ALMEIDA

CAMILA FLÁVIA MATUDA CABRAL

GUILHERME CERQUEIRA COLOMBO

HENRIQUE SILVA MOREIRA

MAYRON GONÇALVES REIS BRUM

RELATÓRIO DA AULA PRÁTICA DE AMIDO-CARBOIDRATO

Trabalho apresentado para a professora Leda Fabiélen Teixeira como avaliação parcial da disciplina bioquímica do curso de Medicina das Faculdades Integradas Aparício Carvalho – FIMCA.

Professor: Msc. Leda Fabiélen Teixeira

PORTO VELHO/RO

2017

1. Sumário

2.        INTRODUÇÃO        4

3.        OBJETIVO GERAL        6

4.        OBJETIVO ESPECÍFICO        6

5.        MATERIAIS E MÉTODOS        7

6.        RESULTADOS E DISCUSSÃO        10

7.        CONCLUSÃO        13

8.        REFERÊNCIAS        14

1. INTRODUÇÃO

Os glicanos também conhecidos como polissacarídeos, consistem-se de monossacarídeos ligados por ligações glicosídicas. Esses são classificados como homopolissacarídeos ou heteropolissacarídeos, se forem constituídos por um tipo ou mais de monossarídeo. [VOET, 2003].

O amido, polissacarídeo de extrema importância em alimentos, é produzido em grande quantidade nas folhas dos vegetais como forma de armazenamento dos produtos da fotossíntese e é a forma de carboidrato mais comum na alimentação humana, representando cerca de 90% dos carboidratos da dieta. Ele é constituído por dois outros polissacarídeos estruturalmente diferentes: α-amilose e amilopectina [SOUZA & NEVES, 2016]

 O Amido é formado por dois polissacarídeos, amilose e amilopectina, que são constituídos de moléculas de α-glicose, mas são ligeiramente diferentes.

 A  α-Amilose corresponde a um polímero de cadeia normal com mais de 1000 moléculas de α-glicose unidas por meio de uma ligação α-1,4’-glicosídica e está presente na proporção de 20 a 30%. Apesar da α-amilose ser um isômero da celulose, ela possui propriedades estruturais muito diferentes. Isso ocorre porque as ligações β-glicosídicas da celulose causam nos resíduos sucessivos de glicose uma rotação de 180º em relação ao resíduo anterior, fazendo com que o polímero assuma uma conformação completamente distendida e facilmente empilhável. As ligações α-glicosídicas da α-amilose fazem com que ela adote uma conformação helicoidal irregularmente agregada.

Já a amilopectina é constituída por cadeias longas e muito ramificadas de unidades de α-glicose unidas entre a ligação α-1,4’-glicosídica. A ramificação é resultado de ligações cruzadas entre o carbono número 1 de uma unidade de glicose e o carbono número 6 de outra unidade (ligação α-1,6’-glicosídica). A amilopectina corresponde, geralmente, a 70 a 80% restantes do amido. As moléculas de amilopectina contém até 106 resíduos de glicose, o que as colocam entre as maiores moléculas presentes na natureza.

O armazenamento de glicose sob forma de amido reduz muito a pressão osmótica intracelular que resultaria do seu armazenamento na forma monomérica, já que a pressão osmótica é proporcional ao número de moléculas de soluto em um dado volume [VOET, 2003].

1. OBJETIVO GERAL

O objetivo geral dessa aula foi expor, na prática, o estudo de polissacarídeos.

1. OBJETIVO ESPECÍFICO

Identificar o amido da batata como um carboidrato através de coloração e precipitação.

1. MATERIAIS E MÉTODOS

Materiais

PARTE I

• 02 béqueres de 100 mL
• 01 béquer de 150 Ml
• 01 funil para filtração
• Bastão de vidro
• 05 tubos de ensaio
• Bico de Bunsen
• Estante para tubos de ensaio
• Pipetas automáticas (1000 µL e volumétricas)
• Gaze
• Colheres
• Filtros de papel
• Reagentes:

• Solução de amido (feita a partir da extração da batata)
• Lugol
• Ácido sulfúrico concentrado
• Solução saturada de sulfato de amônio
• Álcool etílico

PARTE II

• 1 pipeta de vidro de 5mL
• 1 pipetas automática de 1Ml
• 3 Tubos de ensaio
• Estante para tubos de ensaio
• Pinça
• Papel Toalha
• Frasco com água destilada
• Reagentes:

• Reagente de Benedict
• Solução de Glicose 1%
• Solução de Sacarose 1%

Métodos

PARTE I

1. EXTRAÇÃO DO AMIDO

• Raspou-se um pedaço de batata com uma colher em um prato de vidro;
• Transferiram-se as raspas para um béquer de 100 mL;
• Adicionou-se 50 mL de água destilada e agitou-se com o auxílio de um bastão de vidro.
• Filtrou-se o material com o ajuda de uma gaze e transferiu-se o filtrado para um béquer de 150 Ml;
• Obteve-se uma solução de aproximadamente 30 mL;
• Deixou-se a mistura em repouso por 10 minutos e, depois, retirou-se o líquido. A solução de amido ficou depositada ao fundo.

1. Preparo da solução de amido

• Ferveu-se 50 mL de água em um béquer;
• Acrescentou-se aproximadamente 25 mL de água fria na solução obtida anteriormente;
• Adicionou-se 25 mL água fervente à solução, agitando-a com o auxilio de um bastão de vidro
• Continuou-se o aquecimento até que a solução se tornou . Utilizar esta solução para as reações de caracterização e precipitação.

1. Reações de caracterização do amido

1.  Reação com o iodo

• No tubo de ensaio número 1 pipetou-se 2 mL da solução de amido;
• Adicionou-se 3 gotas de lugol; apareceu de cor azul meio esverdeada;
• Aqueceu-se diretamente na chama até o desaparecimento da coloração.

1. Precipitação do amido

1. Precipitação com solução salina saturada

• Em um tubo de ensaio, pipetou-se 2 mL da solução de amido;
• Adicionou-se 5 mL de solução saturada de sulfato amônio e agitou-se;
• Deixando em repouso por 10 minutos;
• Filtrou-se para outro tubo de ensaio;
• Adicionou-se 3 gotas de lugol;
• Observou-se uma solução homogênea de coloração alaranjada

4.2. Precipitação com álcool etílico

• Em um tubo de ensaio pipetou-se 5 mL de solução de amido;
• Adicionou-se 5 mL de álcool etílico e misturou;
• Filtrou-se para outro tubo de ensaio;
• Adicionou-se 3 gotas de lugol diretamente no tubo e mais 3 gotas no filtro;
• Observou-se uma solução amarela quase transparente.

PARTE II

Procedimento:

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